常见问题

可能原因

建议解决方案

少量或没有RT-PCR产物

RNA被降解

分离无污染，高质量的RNA；提取RNA的材料要尽量新鲜，防止RNA降解；RT反应前，在变性胶上分析RNA的完整性；RNA提取后，应储存在100％甲酰胺中， 如果使用RNase抑制剂，加热时小于45℃；pH小于8.0，否则抑制剂会释放所有结合的RNase。而且，在≥0.8mM DTT时加入RNase抑制剂，一定要存在DTT。

RNA中包含逆转录反应的抑制剂

逆转录抑制剂包括：SDS，EDTA，甘油，焦磷酸钠，亚精胺，甲酰胺和胍盐等；将对照RNA和样品混合，与对照RNA反应比较产量，以检验是否有抑制剂；通过70％乙醇对RNA沉淀进行清洗，除去抑制剂。

用于合成cDNA第一链的引物退火不充分

确定退火温度适合实验中所用的引物，对于随机六聚体，建议在反应温度保温之前先在25℃保温10分钟；对于基因特异性引物（GSP），可以试一下其他GSP，或换用oligo(dT)或随机六聚体确定GSP是反义序列。

起始RNA量较少

增加RNA的量。对于小于50ng的RNA样品， 可以在第一链cDNA合成中使用0.1μg－0.5μg乙酰BSA。

目的序列在分析的组织中不表达

尝试其他组织

PCR反应失败

对两步法RT-PCR，在PCR步骤中的cDNA模板不能超过反应体积的1/5

产物有非特异性条带

引物和模板的非特异性退火

避免引物3'端含有2－3个dG或dC；在第一链合成中使用基因特异性引物，而不是随机引物或oligo(dT)；在开始几个循环使用较高的退火温度，然后使用较低的退火温度；使用热启动Taq DNA酶进行PCR，提高反应的特异性。

基因特异性引物设计较差

遵循用于扩增引物设计的同样原则

RNA中有基因组DNA的污染

使用扩增级DNaseⅠ处理RNA；设置没有逆转录的对照反应检测DNA污染。

形成引物二聚体

设计在3'端没有互补序列的引物。

镁离子浓度太高

对于每一个模板和引物组合优化镁离子浓度。

沾染外源DNA

使用抗气雾剂的吸头和UDG酶

产生弥散（smear）条带

第一链产物的含量过高

常规PCR反应步骤中减少第一链产物的量

PCR反应中引物过多

减少引物的用量

循环数过多

优化PCR反应条件，减少PCR的循环次数

退火温度过低

提高退火温度，防止非特异性的起始及延伸

Dnase降解DNA，寡核苷酸片段的产生而导致非特异性扩增

提取高质量RNA，防止被DNA污染